蛋白质组学分析报告

Proteomics Analysis Report

生成时间: 2026-03-16 11:54:15

分析平台: Protein Pipeline Platform

§ 目录

1

实验信息

本次分析的实验设计和样品信息。

实验基本信息

项目内容
项目名称PXD046288
样品类型蛋白质样品
物种Homo sapiens (Human)
实验类型DDA (Data-Dependent Acquisition)
分析日期2026-03-16
分析目录C:\code\protein-pipeline\batch_test_output\PXD046288\analysis
2

软件与参数设置

数据处理和分析所使用的软件及参数配置。

📖 方法说明

  • 原始数据使用 MaxQuant 进行数据库搜索和蛋白鉴定
  • 使用 LFQ 算法进行无标记定量
  • 下游统计分析使用 Python 自动化流程

数据库搜索参数

参数设置
搜索引擎MaxQuant
软件版本2.7.5.0
蛋白数据库UniProt Human Reviewed
酶切方式Trypsin/P
最大漏切位点2
固定修饰Carbamidomethyl (C)
可变修饰Oxidation (M), Acetyl (Protein N-term)
肽段长度7-25 氨基酸
前体离子容差20 ppm (first search), 4.5 ppm (main search)
碎片离子容差20 ppm
FDR 阈值1% (Protein & Peptide)
定量方法LFQ (Label-Free Quantification)
Match Between Runs启用
3

分析概述

本报告对 2 个样品进行了全面的蛋白质组学分析。

288
原始蛋白数
288
有效蛋白数
2
样品数
2
分组数
4

全局质控 - 样品分布

样品表达量分布和数据质量评估。

📖 方法说明

  • 数据经过 log2 转换和中位数归一化
  • 箱型图展示各样品的表达量分布
  • 缺失值分析评估数据完整性
样品强度分布箱型图

样品强度分布箱型图

缺失值分析

缺失值分析

5

全局质控 - PCA 主成分分析

使用主成分分析评估样品间整体差异和分组效果。

📖 方法说明

  • PCA 用于降维和可视化样品间关系
  • PC1/PC2 解释了主要的变异来源
  • 不同颜色代表不同实验分组
PCA 2D 图 (PC1 vs PC2)

PCA 2D 图 (PC1 vs PC2)

6

全局质控 - 样品相关性与聚类

使用 Pearson 相关系数评估样品间的定量一致性,层次聚类分析样品分组效果。

📖 方法说明

  • 计算样品间 Pearson 相关系数
  • 热图颜色表示相关性强度
  • 层次聚类验证样品分组效果
  • 组内样品应具有较高相关性
样品相关性热图

样品相关性热图

层次聚类热图

层次聚类热图

7

差异表达分析

共鉴定到 288 个蛋白,其中 24 个差异表达蛋白(5 个上调,19 个下调)。

288
总蛋白数
24
差异蛋白
5
上调
19
下调

📖 方法说明

  • 使用独立样本 t 检验进行差异分析
  • Fold Change 阈值: |Log2FC| ≥ 1.0
  • 显著性阈值: p-value < 0.05
火山图 (Volcano Plot)

火山图 (Volcano Plot)

差异蛋白热图 (Heatmap)

差异蛋白热图 (Heatmap)

8

差异蛋白列表

显示 24 行,共 288 行 | 显著差异: 24个 (↑5 ↓19)

数据文件: Sample_differential.xlsx

RegulationLog2FC_G_vs_DCMPvalue_G_vs_DCM
↓ 下调-5.19910.0000
↓ 下调-3.76050.0000
↓ 下调-3.38920.0000
↓ 下调-3.15200.0000
↓ 下调-2.88460.0000
↓ 下调-2.67170.0000
↓ 下调-2.34510.0000
↓ 下调-1.81770.0003
↓ 下调-1.78470.0484
↓ 下调-1.58990.0122
↓ 下调-1.54510.0000
↓ 下调-1.52240.0002
↑ 上调1.36340.0000
↓ 下调-1.35140.0000
↑ 上调1.23960.0000
↑ 上调1.16390.0000
↓ 下调-1.15070.0000
↓ 下调-1.14080.0471
↓ 下调-1.12200.0000
↓ 下调-1.11660.0000
↑ 上调1.09730.0000
↓ 下调-1.08870.0134
↓ 下调-1.03030.0244
↑ 上调1.00960.0000
9

检测蛋白交集分析

展示不同实验组之间**检测到的所有蛋白**的交集情况。此图反映各组样品的蛋白组覆盖度。

📖 方法说明

  • 统计各组检测到的蛋白数量(定量值>0)
  • Venn 图/UpSet 图展示组间蛋白交集
  • 识别各组特有检测蛋白
两组检测蛋白交集 Venn 图

两组检测蛋白交集 Venn 图

10

GO 富集分析

对差异表达蛋白进行 Gene Ontology 富集分析,共富集到 404 个显著 GO 条目。

404
GO 条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • 多重检验校正: Benjamini-Hochberg (FDR)
  • 显著性阈值: adjusted p-value < 0.05
GO 气泡图

GO 气泡图

GO 柱状图

GO 柱状图

11

多库富集分析概览

使用 8 个富集库对差异蛋白进行功能注释分析,共富集到 396 个显著条目。

8
富集库
396
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 13 种功能注释数据库进行富集分析
  • 包含: GO, KEGG, Reactome, WikiPathways, BioCarta, InterPro, TF, Immune 等
  • Fisher 精确检验 + BH 多重检验校正
  • 显著性阈值: FDR < 0.25
多库富集分析汇总

多库富集分析汇总

12

KEGG 通路富集分析

使用 KEGG 通路 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

20
富集条目
20
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
  • KEGG 通路链接已生成,可在结果文件中查看
  • 链接文件: kegg_enrichment_with_links.tsv
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

13

Reactome 通路富集分析

使用 Reactome 通路 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

55
富集条目
52
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (上调)

G_vs_DCM (上调)

14

WikiPathways富集分析

使用 WikiPathways 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

24
富集条目
24
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

15

BioCarta 通路富集分析

使用 BioCarta 通路 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

7
富集条目
7
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

16

InterPro 结构域富集分析

使用 InterPro 结构域 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

35
富集条目
35
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

17

转录因子靶基因富集分析

使用 转录因子靶基因 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

51
富集条目
8
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

18

免疫基因集富集分析

使用 免疫基因集 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

256
富集条目
256
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (上调)

G_vs_DCM (上调)

19

染色体位置富集分析

使用 染色体位置 数据库对差异蛋白进行功能富集分析。

4
富集条目
4
显著条目

📖 方法说明

  • 使用 Fisher 精确检验进行富集分析
  • FDR 校正 (Benjamini-Hochberg)
G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (全部差异)

G_vs_DCM (下调)

G_vs_DCM (下调)

20

蛋白质互作网络分析

基于差异蛋白构建蛋白质-蛋白质相互作用 (PPI) 网络。

78
Hub 蛋白

📖 方法说明

  • 使用 STRING 数据库构建 PPI 网络
  • 使用 MCL 算法进行网络聚类
  • 基于度中心性识别 Hub 蛋白
蛋白质相互作用网络

蛋白质相互作用网络

蛋白质相互作用网络

蛋白质相互作用网络

21

Hub 蛋白(关键节点)

网络中连接度最高的蛋白,通常在生物学功能中扮演核心角色。

📖 方法说明

  • Hub 蛋白是网络中连接度最高的节点
  • 高连接度蛋白通常是关键功能调控因子
  • 可作为后续验证实验的优先靶点

Top 10 Hub 蛋白

蛋白 ID连接度中心性
P1122650.0649
Q0359150.0649
P0274150.0649
P0274940.0519
P0275140.0519
O0018740.0519
P0264930.0390
P1059930.0390
P0860330.0390
Q9BXR630.0390
22

结论与展望

本次分析共鉴定到 288 个蛋白质,其中 24 个差异表达蛋白 (5 个上调,19 个下调)。 **主要发现:** 1. 差异蛋白中上调比例为 20.8%,下调比例为 79.2% 2. GO 富集分析揭示了差异蛋白参与的主要生物学过程 3. 网络分析识别出关键的 Hub 蛋白 **后续建议:** - 对关键差异蛋白进行实验验证(Western Blot、qPCR 等) - 结合生物学背景深入分析富集通路 - 关注 Hub 蛋白的功能和调控网络

288
总蛋白
24
差异蛋白